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Apr 18, 2023

A Proteômica Visual Profunda define

Nature Biotechnology volume 40, páginas 1231–1240 (2022)Cite este artigo

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Apesar da disponibilidade de métodos baseados em imagens e baseados em espectrometria de massa para proteômica espacial, um dos principais desafios permanece conectando imagens com medições de abundância de proteínas com resolução de célula única. Aqui, apresentamos a Proteômica Visual Profunda (DVP), que combina a análise de imagem de fenótipos celulares baseada em inteligência artificial com microdissecção automatizada a laser de célula única ou núcleo único e espectrometria de massa de ultra-alta sensibilidade. O DVP vincula a abundância de proteínas a fenótipos celulares ou subcelulares complexos, preservando o contexto espacial. Ao excisar individualmente os núcleos da cultura celular, classificamos estados celulares distintos com perfis proteômicos definidos por proteínas conhecidas e não caracterizadas. Em um tecido de melanoma primário arquivado, o DVP identificou alterações proteômicas espacialmente resolvidas como transição de melanócitos normais para melanoma totalmente invasivo, revelando caminhos que mudam de maneira espacial à medida que o câncer progride, como desregulação de splicing de mRNA no crescimento vertical metastático que coincide com sinalização reduzida de interferon e apresentação do antígeno. A capacidade do DVP de reter informações proteômicas espaciais precisas no contexto do tecido tem implicações para o perfil molecular de amostras clínicas.

A versatilidade, resolução e natureza multimodal da microscopia moderna fornecem imagens cada vez mais detalhadas da heterogeneidade de célula única e da organização do tecido1. Atualmente, um subconjunto predefinido de proteínas é geralmente direcionado, muito aquém da complexidade real do proteoma. Aproveitando a sensibilidade substancialmente aumentada na tecnologia baseada em espectrometria de massa (MS), nos propusemos a permitir a análise de proteomas em seu contexto subcelular nativo para explorar sua contribuição para a saúde e a doença. Combinamos imagens com resolução submícron, análise de imagem para fenotipagem de célula única baseada em inteligência artificial (IA) e isolamento com um fluxo de trabalho de proteômica ultrassensível2 (Fig. 1). Os principais desafios acabaram sendo a definição precisa dos limites de célula única e classes de células, bem como a transferência dos recursos definidos automaticamente em amostras proteômicas, prontas para análise. Para tanto, apresentamos o software 'BIAS' (Biology Image Analysis Software), que coordena microscópios de varredura e microdissecção a laser (LMD). Isso combina perfeitamente imagens ricas em dados de culturas de células ou tecidos de biobancos arquivados (fixados em formalina e embebidos em parafina (FFPE)) com segmentação celular baseada em aprendizado profundo e identificação baseada em aprendizado de máquina de tipos e estados de células. Objetos celulares ou subcelulares de interesse são selecionados apenas pela IA ou após instrução antes de serem submetidos a LMD automatizado e perfil proteômico. Os dados gerados pelo DVP podem ser extraídos para descobrir assinaturas de proteínas, fornecendo informações moleculares sobre a variação do proteoma no nível fenotípico, mantendo informações espaciais completas.

O DVP combina imagem de alta resolução, análise de imagem guiada por IA para classificação e isolamento de célula única com um fluxo de trabalho de proteômica ultrassensível2. O DVP vincula imagens ricas em dados de cultura celular ou tecidos de biobancos de pacientes arquivados com segmentação celular baseada em aprendizado profundo e identificação baseada em aprendizado de máquina de tipos e estados de células. Objetos celulares ou subcelulares classificados por IA (não) supervisionados de interesse passam por perfis proteômicos baseados em LMD e MS automatizados. A análise subsequente de dados de bioinformática permite a mineração de dados para descobrir assinaturas de proteínas, fornecendo informações moleculares sobre a variação do proteoma nos estados de saúde e doença no nível de células individuais. tSNE, incorporação estocástica de vizinhança t-distribuída.

Os aspectos relacionados à microscopia do fluxo de trabalho do DVP baseiam-se em imagens de slides inteiros de alta resolução, aprendizado de máquina (ML) e aprendizado profundo (DL) para análise de imagens.

 0.96). The lower correlation of normal cells and cancer cells reflected disease-specific and cell-type-specific proteome changes (Pearson r = 0.8; Fig. 4d,e and Supplementary Table 6). Acinar cell markers in the carcinoma were significantly downregulated, consistent with previous reports25. DVP allowed us to discover upregulation of interferon response proteins (for example, MX1 and HLA-A; Supplementary Table 6) and the proto-oncogene SRC, both actionable therapeutic targets26 (Fig. 4e). We validated the proteomic findings using IHC analysis of significantly enriched proteins in either normal-appearing or cancererous tissue. This resulted in the selection of CNN1, SRC, CK5 and FASN (Fig. 4f), which confirmed our proteomic results, demonstrated the absence of contamination and supported the specificity of our DVP approach./p> 700 in a total m/z range of 100–1.700 by synchronizing quadrupole switching events with the precursor elution profile from the TIMS device. The collision energy was lowered linearly as a function of increasing mobility starting from 59 eV at 1/K0 = 1.6 Vs cm−2 to 20 eV at 1/K0 = 0.6 Vs cm−2. Singly charged precursor ions were excluded with a polygon filter (otof control, Bruker Daltonik). Precursors for MS/MS were picked at an intensity threshold of 1.000 arbitrary units (a.u.) and re-sequenced until reaching a ‘target value’ of 20.000 a.u., taking into account a dynamic exclusion of 40-second elution. For data-independent analysis, we made use of the correlation of ion mobility with m/z and synchronized the elution of precursors from each ion mobility scan with the quadrupole isolation window. The collision energy was ramped linearly as a function of the ion mobility from 59 eV at 1/K0 = 1.6 Vs cm−2 to 20 eV at 1/K0 = 0.6 Vs cm−2. We used the ddaPASEF method for library generation./p>

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